home *** CD-ROM | disk | FTP | other *** search
/ Group 42-Sells Out! - The Information Archive / Group 42 Sells Out (Group 42) (1996).iso / drugs / psychade / ergot2.txt < prev    next >
Text File  |  1995-11-30  |  6KB  |  120 lines

  1. Here in alt.drugs have been lot of talk about LSD synthesis lately.
  2. I guess as an conclusion it can be said that the synthesis can be
  3. carried out with good chemistry knowledge and laboratory. Then the
  4. problem is where to get lysergic acid derivative for the synthesis.
  5. The full synthesis of the lysergic acid is too difficult. Lysergic
  6. acid amides can be extracted from the seeds of morning glory or
  7. hawaiian baby wood rose, but it is not practical, because the huge
  8. amount of seeds needed to get enough lysergic acid amides for
  9. the LSD synthesis. To my opinion the only feasible possibility is
  10. to cultivate ergot.
  11.  
  12. What I would like to know is how difficult it is to cultivate
  13. Claviceps purpurea for example. Is it harder than growing psychedelic
  14. mushrooms? Is the following procedure any good and how hard it is
  15. to carry out? Any constructive comments?
  16.  
  17.  
  18. Michael Valentine Smith: Psychedelic Chemistry
  19.  
  20. From pages 105-107:
  21.  
  22. The Culture and Extraction of Ergot Alkaloids
  23.  
  24. Make up a culture medium by combining the following ingredients in about
  25. 500 milliliters of distilled water in a 2 liter, small-neck flask:
  26.  
  27.   Sucrose .......................................... 100 grams
  28.   Chick pea meal .................................... 50 grams
  29.   Calcium nitrate ..................................... 1 gram
  30.   Monopotassium phosphate ......................... 0.25 grams
  31.   Magnesium sulphate .............................. 0.25 grams
  32.   Potassium chloride ............................. 0.125 grams
  33.   Ferrous sulphate heptahydrate ................... 8.34 milligrams
  34.   Zinc sulphate heptahydrate ...................... 3.44 milligrams
  35.  
  36. Add water to make up one liter, adjust pH 4 with ammonia solution and
  37. citric acid. Sterile by autoclaving.
  38.  
  39. Inoculate the sterilized medium with Claviceps purpurea under sterile
  40. conditions, stopper with sterilized cotton and incubate for two weeks
  41. periodically testing and maintaining pH 4. After two weeks a surface
  42. culture will be seen on the medium. Large-scale production of the
  43. fungus can now begin.
  44.  
  45. Obtain several ordinary 1 gallon jugs. Place a two-hole stopper in
  46. the necks of the jugs. Fit a short (6 inch) glass tube in one hole,
  47. leaving 2 inches above the stopper. Fit a short rubber tube to this.
  48. Fill a small (500 milliliter) Erlenmeyer flask with a dilute solution
  49. of sodium hypochlorite, and extend a glass tube from the rubber tube
  50. so the end is immersed in the hypochlorite. Fit a long, glass tube in
  51. the other stopper hole. It must reach near the bottom of the jug and
  52. have about two inches showing above the stopper. Attach a rubber tube
  53. to the glass tube as short or as long as desired, and fit a short glass
  54. tube to the end of the rubber tube. Fill a large, glass tube (1 inch x
  55. 6 inches) with sterile cotton and fit 1-hole stoppers in the ends.
  56. Fit the small, glass tube in end of the rubber tube into 1 stopper of
  57. the large tube. Fit another small glass tube in the other stopper.
  58. A rubber tube is connected to this and attached to a small air pump
  59. obtained from a tropical fish supply store. You now have a set-up for
  60. pumping air from the pump, through the cotton filter, down the long
  61. glass tube in the jug, through the solution to the air space in the top
  62. of the jug, through the short glass tube, down to the bottom of the
  63. Erlenmeyer flask and up through the sodium hypochlorite solution into
  64. the atmosphere. With this aeration equipment you can assure a supply
  65. of clean air to the Claviceps purpurea fungus while maintaining a
  66. sterile atmosphere inside the solution.
  67.  
  68. Dismantle the aerators. Place all the glass tubes, rubber tubes,
  69. stoppers and cotton in a paper bag, seal tight with wire staples
  70. and sterilize in an autoclave.
  71.  
  72. Fill the 1-gallon jugs 2/3 to 3/4 full with the culture medium and
  73. autoclave.
  74.  
  75. While these things are being sterilized, homogenize in a blender the
  76. culture already obtained and use it to inoculate the media in the
  77. gallon jugs. The blender must be sterile. Everything must be sterile.
  78.  
  79. Assemble the aerators. Start the pumps. A slow bubbling in each jug
  80. will provide enough oxygen to the cultures. A single pump can, of
  81. course, be connected to several filters.
  82.  
  83. Let everything sit a room temperature (25 C) in a fairly dark place
  84. (never expose ergot alkaloids to bright light - they decompose) for
  85. a period of ten days.
  86.  
  87. After ten days adjust the culture to 1% ethanol using 95% ethanol
  88. under sterile conditions. Maintain growth for another two weeks.
  89.  
  90. After total of 24 days growth period the culture should be considered
  91. mature. Make the culture acidic with tartaric acid and homogenize in
  92. a blender for one hour.
  93.  
  94. Adjust to pH 9 with ammonium hydroxide and extract with benzene or
  95. chloroform/iso-butanol mixture.
  96.  
  97. Extract again with alcoholic tartaric acid and evaporate in a vacuum
  98. to dryness. The dry material in the salt (i.e., the tartaric acid salt,
  99. the tartrate) of the ergot alkaloids, and is stored in this form because
  100. the free basic material is too unstable and decomposes readily in the
  101. presence of light, heat, moisture and air.
  102.  
  103. To recover the free base for extraction of the amide of synthesis to
  104. LSD, make the tartrate basic with ammonia to pH 9, extract with chloroform
  105. and evaporate in vacuo.
  106.  
  107. If no source of pure Claviceps purpurea fungus can be found, it may be
  108. necessary to make a field trip to obtain the ergot growths from rye or
  109. other cereal grasses. Rye grass is by far the best choice. The ergot will
  110. appear as a blackish growth on the tops of the rye where the seeds are
  111. and are referred to as "heads of ergot." From these heads of ergot sprout
  112. the Claviceps purpurea fungi. They have long steams with bulbous heads when
  113. seen under a strong glass or microscope. It is these that must be removed
  114. from the ergot, free from contamination, and used to inoculate the culture
  115. media. The need for absolute sterility cannot be overstressed. Consult any
  116. elementary text on bacteriology for the correct equipment and procedures.
  117. Avoid prolonged contact with ergot compounds, as they are poisonous and
  118. can be fatal.
  119.  
  120.